Preanalytiske faktorer og ekstraksjon fra FFPE – materiale for NGS-analyse

Preanalytiske betingelser

Faglig oppdatert: 16.09.2026
Publisert dato: 17.09.2026
Utgiver: Nasjonalt kompetansenettverk for persontilpasset medisin
Versjon: 1.0
Foreslå endringer/gi kommentarer

Tabell: Preanalytiske betingelser 

Preanalytiske faktorer

Anbefalinger

God arbeidsflyt

  • God kommunikasjon mellom patologiavdelingen og laboratoriet som utfører molekylære analyser.
  • Sporing på prosessene som utføres ved patologiavdelingene.
  • Ved innføring av nye prosedyrer på patologiavdelingen bør effekten på DNA/RNA-kvalitet testes før implementering.

Makrobeskjæring

  • Ha gode rutiner for renslighet under makrobeskjæring av preparater for å redusere risikoen for kontaminering mellom prøver.

Fikseringsmiddel 

  • Bruk lavkonsentrert (4 % formaldehyd) nøytralt bufret formalin (kontroller pH ved verifisering).12
  • Formalin bør brukes innen 24 timer etter fortynning til 4 % for å sikre stabil konsentrasjon og hindre effekt av polymerisering.3  

Dekalsinering

  • Unngå bruk av dekalsinert prøvemateriale dersom mulig, da dekalsinering bryter ned nukleinsyrene.
  • Ved behov for dekalsinering anbefales bruk av bufret EDTA, da sterke syrer i større grad skader nukleinsyrene.3
  • Vurder bruk av instrumenter (f.eks. Faxitron) for å overvåke porøsitet og stoppe dekalsineringsprosessen i tide.4 

Fikseringstid

 

  • Patologiavdelingenes retningslinjer for fikseringstid bør være optimalisert i forhold til DNA/RNA kvalitet.
  • Unngå overfiksering av vev for å hindre formalin-induserte. kryssbindinger, deamineringer og fragmentering av nukleinsyrer.5
  • Unngå underfiksering ved å gjennomskjære store preparater for å sikre rask infusjon av formalin slik at DNA/RNA bevares.
  • Unngå fiksering av nålebiopsier og små biopsier over helg for å hindre overfiksering som gir større grad av formaldehyd-induserte kryssbindinger, deamineringer og fragmentering av nukleinsyrer.5
  • Ha dialog med klinikk om mulighet for eget vevsuttak til molekylære analyser der det er vurdert nødvendig.

Fremføring

  • Patologiavdelingenes retningslinjer for fremføring og innstøping bør være optimalisert i forhold til DNA/RNA-kvalitet.
  • Ved automatisert hurtigfiksering og fremføring: Unngå hurtigfiksering ved høy temperatur da dette øker degraderingen av nukleinsyrene.
  • Velg egnet fremføringsprogram etter vevstype, fettinnhold og størrelse.
  • Erstatning for Xylen i fremføringsprosessen har vist god effekt på DNA/RNA-kvalitet.6

Parafinkvalitet

  • Ulike typer parafin kan påvirke molekylære analyser. Undersøk om parafinen er egnet for molekylære analyser ved bytte av parafinleverandør.

God arbeidsflyt 

Grunnlaget for god DNA/RNA-kvalitet legges i den preanalytiske fasen av arbeidet. Et tett og strukturert samarbeid med patologiavdelingen i forbindelse med prosessene ved fremstilling av FFPE-materiale er essensielt for å sikre god kvalitet på pasientmateriale til NGS-analyser. Sporing på de ulike laboratorieprosessene gjør det lettere ved behov for feilsøking og anbefales for best mulig arbeidsflyt.

 

Laboratoriepersonell med ansvar for ekstraksjon av nukleinsyrer bør involveres i beslutningsprosesser hvor patologiavdelingen endrer betingelser ved de preanalytiske forholdene, som f.eks. ved bytte av fikseringsmiddel, dekalsineringsløsning, parafinvoks, endret fikseringstid eller fremføringsprogram. Slike endringer bør valideres på molekylært nivå for å sikre at de ikke påvirker kvaliteten på DNA/RNA-analyser negativt.

 

På et organisatorisk nivå anbefales det at de molekylærpatologiske laboratoriene etablerer faste kommunikasjonslinjer med patologiavdelingen, med jevnlige treffpunkt. Dette vil legge til rette for effektiv informasjonsutveksling mellom enhetene og videre bidra til økt effektivitet og styrket pasientsikkerhet.

Makrobeskjæring 

Økende sensitivitet i NGS-analyser medfører økt risiko for at kontaminasjon fra makrobeskjæring kan påvirke analyseresultatet. Dersom det ikke benyttes rene arbeidsforhold, inkludert skifte eller grundig rengjøring av underlag og utstyr som benyttet til makrobeskjæring, kan det foreligge fare for at vevsrester fra en prøve overføres til den neste. Slik kontaminering kan gi feiltolkning av genetiske funn og redusere analysen pålitelighet.7

 

Tid fra biopsien tas til prøven blir makrobeskåret før videre fiksering, fremføring og innstøping kan utgjøre en flaskehals på histologilaben. Prioriter preparat av små nålebiopsier eller lymfeknuter først og unngå at de blir liggende for lenge i fikseringsløsning i forhold til anbefalt fikseringstid på 24 t.

Dekalsinering 

Dekalsinert prøvemateriale bør unngås da dekalsinering bryter ned nukleinsyrer. Ved behov anbefales bruk av bufret EDTA fremfor sterke syrer,3 samt bildeteknologi for å kunne stoppe dekalsineringen i tide. Faxitron teknologien benytter høyoppløselige røntgenbilder for å   lokalisere kalk i vevet og gir dermed mulighet for å tilpasse dekalisneringstid og kjemikalievalg.4  Instrumentet kan også brukes til å kartlegge om materiale (f.eks. beinmarg) har oppnådd porøsitet underveis i dekalsineringsprosessen og dermed stoppe dekalsineringen på et tidligere tidspunkt. Dette beskytter vevsstrukturen, bevarer morfologien og er gunstig for alle nedstrøms analyser.

Fiksering og fremføring 

Valg av raskere automatiserte fikserings- og fremføringsprosesser med høy temperatur kan redusere svartid og virke fordelaktig for pasienten, men må tilpasses kravene til både molekylærpatologiske og immunhistokjemiske analyser. Ved store forskjeller i optimale forhold bør det etableres dialog med klinikk og vurderes egne vevsuttak til molekylære analyser. Fiksering av prostata nålebiopsi anbefales f. eks 3–6 timers fikseringstid til NGS,8 mens lengre tid kan være nødvendig for immunhistokjemi. Overfiksering kan føre til formaldehyd-induserte kryssbindinger, deamineringer og fragmentering av nukleinsyrer og bør unngås for å oppnå en vellykket sekvensering.5 Dette kan f. eks oppstå for nålebiopsier som blir liggende i fikseringsmiddel over helg.  Se kapittel om Kvalitetsmål for tester som kan undersøke fragmenteringsgrad.

Referanser 

1. Amemiya K, Hirotsu Y, Oyama T, Omata M. Relationship between formalin reagent and success rate of targeted sequencing analysis using formalin fixed paraffin embedded tissues. Clin Chim Acta. 2019;488:129–34.
2. Nagahashi M, Shimada Y, Ichikawa H, Nakagawa S, Sato N, Kaneko K, et al. Formalin-fixed paraffin-embedded sample conditions for deep next generation sequencing. J Surg Res. 2017;220:125–32.
3. Cree IA, Deans Z, Ligtenberg MJ, Normanno N, Edsjo A, Rouleau E, et al. Guidance for laboratories performing molecular pathology for cancer patients. J Clin Pathol. 2014;67(11):923–31.
4. Faxitron® Path Specimen Radiography System  [Available from: hologic.com/FaxitronPath.
5. Arreaza G, Qiu P, Pang L, Albright A, Hong LZ, Marton MJ, et al. Pre-Analytical Considerations for Successful Next-Generation Sequencing (NGS): Challenges and Opportunities for Formalin-Fixed and Paraffin-Embedded Tumor Tissue (FFPE) Samples. Int J Mol Sci. 2016;17(9).
6. Vincek V, Nassiri M, Knowles J, Nadji M, Morales AR. Preservation of tissue RNA in normal saline. Lab Invest. 2003;83(1):137–8.
7. Hodgson AJ, Shang YM, Boulianne P, Downes MR, Hwang D, Slodkowska E. A Practical Approach to Investigating Cross-Contaminants in the Anatomical Pathology Laboratory. Int J Surg Pathol. 2020;28(7):700–10.
8. Gonzalez D, Mateo J, Stenzinger A, Rojo F, Shiller M, Wyatt AW, et al. Practical considerations for optimising homologous recombination repair mutation testing in patients with metastatic prostate cancer. J Pathol Clin Res. 2021;7(4):311–25.